Preview

Научно-практическая ревматология

Расширенный поиск

Оппортунистические микроорганизмы при ревматических заболеваниях

https://doi.org/10.14412/1995-4484-2016-100-104

Полный текст:

Аннотация

Представлены данные литературы о роли оппортунистических микроорганизмов при ревматических заболеваниях (РЗ). Предполагается возможное участие условно-патогенных микроорганизмов (УПМ) в качестве триггерных факторов, инициирующих развитие хронического воспаления. Наряду с этим УПМ при аутоиммунных заболеваниях могут играть защитную роль за счет взаимодействия с Toll-like рецепторами и активации T-клеток, обладающих супрессорной активностью. Возможность участия УПМ в патогенезе РЗ подтверждает не только выделение микроорганизмов, но и обнаружение антибактериальных антител различных классов. Велико значение УПМ в этиологии коморбидных инфекций, риск развития которых обусловлен как наличием аутоиммунного РЗ, так и необходимостью применения препаратов, обладающих иммуносупрессивным действием. Активное внедрение в клиническую практику генно-инженерных биологических препаратов сопровождается нарастанием частоты и тяжести течения различных инфекций, в том числе вызванных УПМ. Оппортунистические микроорганизмы, обладая выраженной биологической и экологической пластичностью, способны длительно персистировать в условиях изменения иммунной защиты организма больных РЗ. Приводятся данные о повышении адгезивных свойств и персистентного потенциала микроорганизмов, колонизирующих организм больных РЗ. При РЗ выделяются УПМ, которые отличаются выраженной полирезистентностью к антибиотикам, что затрудняет лечение и профилактику оппортунистических инфекций в ревматологии. Результаты работ, анализируемых в обзоре, свидетельствуют о практической значимости изучения оппортунистических микроорганизмов при РЗ.

Об авторах

М. Ю. Гульнева
ГБОУ ВПО «Ярославский государственный медицинский университет» Минздрава России
Россия
150000 Ярославль, ул. Революционная, 5


С. М. Носков
ГБОУ ВПО «Ярославский государственный медицинский университет» Минздрава России
Россия
150000 Ярославль, ул. Революционная, 5


Э. В. Малафеева
ГБОУ ВПО «Ярославский государственный медицинский университет» Минздрава России
Россия
150000 Ярославль, ул. Революционная, 5


Список литературы

1. Марри ПР, Шей ИР. Клиническая микробиология. Москва; 2006. 425 с. [Murray PR, Shay IR. Klinicheskaya mikrobiologiya [Clinical Microbiology]. Moscow; 2006. 425 р.].

2. Бондаренко ВМ. Механизмы транслокации бактериальной аутофлоры в развитии эндогенной инфекции. Бюллетень Оренбургского научного центра УРО РАН. 2013;(3):1-19 [Bondarenko VM. Mechanisms of bacterial translocation in the development autoflora en Dogen infection. Bulletin of the Orenburg Scientific Center of UB RAS. 2013;(3):1-19 (In Russ.)].

3. Белов БС, Насонов ЕЛ. Оппортунистические инфекции в ревматологии: Status praesens. Русский медицинский журнал. 2010;27:1649 [Belov BS, Nasonov EL. Opportunistic infections in rheumatology: Status praesens. Russkii meditsinskii zhurnal = Russian Medical Journal. 2010;27:1649 (In Russ.)].

4. Luzzaro F, Ortisi G, Larosa M, et al. Prevalence and epidemiology of microbial pathogens causing bloodstream infection: results of the oasis multicenter study. Diagn Microbial Infect Dis. 2011;69(4):363-9. doi: 10.1016/j.diagmicrobio.2010.10.016

5. Walker MJ, Barnett TC, McArthur JD, et al. Disease manifestations and pathogenic mechanisms of group a Streptococcus. Clin Microbiol Rev. 2014;27(2):264-301. doi: 10.1128/CMR.00101-13

6. Marie I, Hachulla E, Cherin P, et al. Opportunistic infections in polymyositis and dermatomyositis. Arthritis Rheum. 2005;53(2):155-65. doi: 10.1002/art.21083

7. Michalsen A, Riegert M, Ludtke R, et al. Mediterrane diet or extended fasting’s influence on changing the intestinal microflora, immunoglobulin A secretion and clinical outcome in patients with rheumatoid arthritis and fibromyalgia: an observational study. BMC Compl Altern Med. 2005;22(5):22. doi: 10.1186/1472-6882-5-22

8. Абельдяев ДВ, Шостак НА, Тимофеев ВТ и др. Нозологическая диагностика и исходы артрита, ассоциированного со стрептококковой инфекцией (ААСИ). Научно-практическая ревматология. 2006;(2):73 [Abeldyaev DV, Shostak NA, Timofeev VT, et al. The nosological diagnosis and outcomes of arthritis associated with streptococcal infection (AASI). Nauchno-Prakticheskaya Revmatologiya = Rheumatology Science and Practice. 2006;(2):73 (In Russ.)].

9. Rashid T, Ebringer A. Rheumatoid arthritis is linked to Proteus – the evidence. Clin Rheumatol. 2007:26(7):1036-43. doi: 10.1007/s10067-006-0491-z

10. Rashid T, Ebringer A. Autoimmunity in rheumatic diseases is induced by microbial infections via crossreactivity or molecular mimicry. Autoimmune Dis. 2012;2012:539282. doi: 10.1155/2012/539282

11. Arabski M, Fudala R, Koza A, et al. The presence of anti-LPS antibodies and human serum activity against Proteus mirabilis S/R forms in correlation with TLR4 (Thr399Ile) gene polymorphism in rheumatoid arthritis. Clin Biochem. 2012;45(16-17):1374-82. doi: 10.1016/j.clinbiochem.2012.06.021

12. Ebringer A, Rashid T. Rheumatoid arthritis is caused by a Proteus urinary tract infection. APMIS. 2014;122(5):363-8. doi: 10.1111/apm.12154

13. Ebringer A, Rashid T. Rheumatoid arthritis is caused by Proteus: the molecular mimicry theory and Karl Popper. Front Biosci (Elite Ed). 2009;(1):577-86.

14. Ebringer A, Rashid T, Wilson C. Rheumatoid arthritis, Proteus, anti-CCP antibodies and Karl Popper. Autoimmun Rev. 2010;9(4):216-23. doi: 10.1016/j.autrev.2009.10.006

15. Rashid T, Ebringer A. Rheumatoid arthritis in smokers could be linked to Proteus urinary tract infections. Med Hypotheses. 2008;70(5):975-80. doi: 10.1016/j.mehy.2007.08.026

16. Varley CD, Deodhar AA, Ehst BD, et al. Persistence of Staphylococcus aureus colonization among individuals with immune-mediated inflammatory diseases treated with TNF-α inhibitor therapy. Rheumatology (Oxford). 2014;53(2):332-7. doi: 10.1093/rheumatology/ket351

17. Grammatico-Guillon L, Baron S, Gettner S, et al. Bone and joint infections in hospitalized patients in France, 2008: clinical and economic outcomes. J Hosp Infect. 2012;82(1):40-8. doi: 10.1016/j.jhin.2012.04.025

18. Laudien M, Gadola SD, Podschun R, et al. Nasal carriage of Staphylococcus aureus and endonasal activity in Wegener’s granulomatosis as compared to rheumatoid arthritis and chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Clin Exp Rheumatol. 2010;28(1):51-5.

19. Giladi H, Sukenik S, Flusser D, et al. A rare case of enterobacter endocarditis superimposed on a mitral valve rheumatoid nodule. J Clin Rheumatol. 2008;14(2):97-100. doi: 10.1097/RHU.0b013e31816d5ea5

20. Newkirk MM. Distinct bacterial colonization patterns of Escherichia coli subtypes associate with rheumatoid factor status in early inflammatory arthritis. Rheumatology (Oxford). 2010;49(7):1311-6. doi: 10.1093/rheumatology/keq088

21. Scher JU, Sczesnak A, Longman RS, et al. Expansion of intestinal Prevotella copri correlates with enhanced susceptibility to arthritis. Elife. 2013 Nov 5;2:e01202. doi: 10.7554/eLife.01202

22. Constantiniu S, Romaniuc A, Chiriac R. Antibacterial antibodies for some enterobacteria in sera of patients with reactive arthritis and other rheumatoid diseases. Roum Arch Microbiol Immunol. 2008;67(1-2):30-5.

23. Terato K, Do CT, Cutler D, et al. Preventing intense false positive and negative reactions attributed to the principle of ELISA to reinvestigate antibody studies in autoimmune diseases. J Immunol Methods. 2014;407:15-25. doi: 10.1016/j.jim.2014.03.013

24. Gautam V, Sehgal R, Paramjeet SG, et al. Detection of antiProteus antibodies in sera of patients with rheumatoid arthritis. Indian J Pathol Microbiol. 2003;46(1):137-41.

25. Nowak B, Kowalski M, Maczyrnska B, et al. Antibodies to Klebsiella O-antigens in patients with seronegative spondyloarthropaties. Pol Arch Med Wewn. 2006;115(3):203-9.

26. Wilson C, Rashid T, Tiwana H, et al. Cytotoxicity responses to peptide antigens in rheumatoid arthritis and ankylosing spondylitis. J Rheumatol. 2003;30(5):972-8.

27. Rashid T, Jayakumar KS, Binder A. Rheumatoid arthritis patients have elevated antibodies to cross-reactive and non cross-reactive antigens from Proteus microbes. Clin Exp Rheumatol. 2007;25(2):259-67.

28. Rashid T. The potential use of antibacterial peptide antibody indices in the diagnosis of rheumatoid arthritis and ankylosing spondylitis. J Clin Rheumatol. 2006;12(1):11-6. doi: 10.1097/01.rhu.0000200374.14619.f2

29. Newkirk MM, Goldbach-Mansky R, Senior BW. Elevated levels of IgM and IgA antibodies to Proteus mirabilis and IgM antibodies to Escherichia coli are associated with early rheumatoid factor (RF)-positive rheumatoid arthritis. Rheumatology (Oxford). 2005;44(11):1433-41. doi: 10.1093/rheumatology/kei036

30. Syrbe U, Scheer R, Wu P, et al. Differential synovial Th1 cell reactivity towards Escherichia coli antigens in patients with ankylosing spondylitis and rheumatoid arthritis. Ann Rheum Dis. 2012;71(9):1573-6. doi: 10.1136/annrheumdis-2012-201404

31. Ogrendik M. Rheumatoid arthritis is linked to oral bacteria: etiological association. Mod Rheumatol. 2009;19(5):453-6. doi: 10.3109/s10165-009-0194-9

32. Rinaudo-Gaujous M, Moreau A, Blasco-Baque V, et al. Evaluation of porphyromonas gingivalis serology in rheumatic and non-rheumatic inflammatory disease. Ann Rheum Dis. 2014;73(1):2013-51. doi: 10.1136/annrheumdis-2013-205124.167

33. Röhner E, Detert J, Kolar P, et al. Induced apoptosis of chondrocytes by Porphyromonas gingivalis as a possible pathway for cartilage loss in rheumatoid arthritis. Calcif Tissue Int. 2010;87(4):333-0. doi: 10.1007/s00223-010-9389-5

34. Cunningham MW. Rheumatic fever, autoimmunity, and molecular mimicry: the streptococcal connection. Int Rev Immunol. 2014;33(4):314-29. doi: 10.3109/08830185.2014.917411

35. Tandon R, Sharma M, Chandrashekhar Y, et al. Neonatal microbial flora and disease outcome. Nestle Nutr Workshop Ser Pediatr Program. 2008;61:211-24.

36. Kivity S, Arango MT, Ehrenfeld M, et al. Infection and autoimmunity in Sjogren’s syndrome: A clinical study and comprehensive review. J Autoimmun. 2014;14:17-22. doi: 10.1016/j.jaut.2014.02.008

37. Hitchon CA, Chandad F, Ferucci ED, et al. Antibodies to porphyromonas gingivalis are associated with anticitrullinated protein antibodies in patients with rheumatoid arthritis and their relatives. Arthritis Res Ther. 2010;37(6):1105-12. doi: 10.3899/jrheum.091323

38. Szymula A, Rosenthal J, Szczerba BM, et al. T cell epitope mimicry between Sjö gren’s syndrome Antigen A (SSA)/Ro60 and oral, gut, skin and vaginal bacteria. Clin Immunol. 2014;152(1-2):1-9. doi: 10.1016/j.clim.2014.02.004

39. Singh YP, Singh AK, Aggarwal A, et al. Evidence of cellular immune response to outer membrane protein of Salmonella typhimurium in patients with enthesitis related arthritis subtype of juvenile idiopathic arthritis. J Rheumatol. 2011;38(1):161-6. doi: 10.3899/jrheum.100542

40. Белов БС, Балабанова РМ, Манукян СГ и др. Инфекции и ревматические болезни: взгляд на проблему в начале XXI века. Вестник РАМН. 2008;(6):14-8 [Belov BS, Balabanova RM, Manukyan SG, et al. Infections and rheumatic diseases: a look at the problem at the beginning of the XXI century. Bulletin of Medical Sciences. 2008;(6):14-8 (In Russ.)].

41. Белов БС. Проблема коморбидных инфекций у больных ревматоидным артритом. Современная ревматология. 2014;(2):21–7 [Belov BS. Comorbid infections in patients with rheumatoid arthritis. Sovremennaya revmatologiya = Modern Rheumatology Journal. 2014;(2):21–7 (In Russ.)]. doi: 10.14412/1996-7012-2014-2-21-27

42. Hü gle T, Daikeler T, Tyndall A. Biologics and infections in rheumatic diseases. Ther Umsch. 2014;71(1):45-53. doi: 10.1024/0040-5930/a000480

43. Nanau RM, Neuman MG. Safety of anti-tumor necrosis factor therapies in arthritis patients. J Pharm Pharm Sci. 2014;17(3):324-61.

44. Perez-Zafrilla B, Carmona L, Gomez-Reino JJ. Infections in patients with rheumatic diseases treated with TNF antagonists. Curr Pharm Biotechnol. 2012;13(8):1418-25. doi: 10.2174/138920112800784808

45. Tsay TB, Yang MC, Chen PH, et al. Gut flora enhance bacterial clearance in lung through toll-like receptors 4. J Biomed Sci. 2011;18(10):68. doi: 10.1186/1423-0127-18-68

46. Mange JP, Stephan R, Borel N, et al. Adhesive properties of Enterobacter sakazakii to human epithelial and brain microvascular endothelial cells. BMC Microbiol. 2006;6(58):1186-1471.

47. Deckers D, Vanlint D, Callewaert L, et al. Role of the lysozyme inhibitor Ivy in growth or survival of Escherichia coli and Pseudomonas aeruginosa bacteria in hen egg white and in human saliva and breast milk. Appl Environ Microbiol. 2008;74(14):4434-9. doi: 10.1128/AEM.00589-08

48. Leysen S, Vanderkelen L, van Asten K, et al. Structural characterization of the PliG lysozyme inhibitor family. J Struct Biol. 2012;180(1):235-42. doi: 10.1016/j.jsb.2012.05.006

49. Рыбальченко ОВ, Бондаренко ВМ. Образование биопленок симбионтными представителями микробиоты кишечника как форма существования бактерий. Вестник СПбГУ. 2013;11(1):179-81 [Rybal'chenko OV, Bondarenko VM. The formation of biofilms symbiont representatives of intestinal microbiota as a form of existence of bacteria. Bulletin of St. Petersburg State University. 2013;11(1):179-81 (In Russ.)].

50. Mah TF. Biofilm-specific antibiotic resistance. Future Microbiol. 2012 Sep;7(9):1061-72. doi: 10.2217/fmb.12.76

51. Романова ЮМ, Гинцбург АЛ. Бактериальные биопленки как естественная форма существования бактерий в окружающей среде и в организме хозяина. Журнал микробиологии. 2011;(3):99-109 [Romanov YM, Gunzburg AL. Bacterial biofilms as the EU-natural to form the existence of bacteria in the environment and in the host organism. J Microbiol. 2011;(3):99-109 (In Russ.)].

52. Boll EJ, Struve C, Boisen N, et al. Role of enteroaggregative Escherichia coli virulence factors in uropathogenesis. Infect Immun. 2013;81(4):1164-71. doi: 10.1128/IAI.01376-12

53. Maduka-Ezeh AN, Greenwood-Quaintance KE, Karau MJ, et al. Antimicrobial susceptibility and biofilm formation of Staphylococcus epidermidis small colony variants associated with prosthetic joint infection. Diagn Microbiol Infect Dis. 2012;74(3):224-9. doi: 10.1016/j.diagmicrobio.2012.06.029

54. Гульнева МЮ, Романов ВА, Шитов ЛН. Адгезивные свойства микроорганизмов, колонизирующих организм больных ревматоидным артритом и системной красной волчанкой. Журнал микробиологии. 2011;(2):57-61 [Gulneva MYu, Romanov VA, Shitov LN. Adhesive properties of microorganisms colonizing rheumatoid arthritis and systemic lupus erythematosus patients. J Microbiology. 2011;(2):57-61 (In Russ.)].

55. Гульнева МЮ, Кулибин АЮ, Малафеева ЭВ. Факторы персистенции условно-патогенных микроорганизмов, выделенных у больных ревматическими заболеваниями. Фундаментальные исследования. 2011;(9):45-7 [Gulneva MYu, Kulibin AY, Malafeeva EV. Persistence factors of the opportunistic pathogens isolated from patients with rheumatic diseases. Fundamental Research. 2011;(9):45-7 (In Russ.)].

56. Малафеева ЭВ, Гульнева МЮ, Носков СМ, Романов ВА. Формирование биопленок условно-патогенными микроорганизмами, выделенными у больных с ревматическими заболеваниями. Клиническая лабораторная диагностика. 2014;(11):53-5 [Malafeeva EV, Gulneva MYu, Noskov SM, Romanov VA. Formation of biofilms opportunistic pathogens isolated from patients with rheumatic diseases. Clinical Laboratory Diagnostics. 2014;(11):53-5 (In Russ.)].

57. Rönnberg E, Johnzon CF, Calounova G, et al. Mast cells are activated by Staphylococcus aureus in vitro but do not influence the outcome of intraperitoneal Staphylococcus aureus infection in vivo. Immunology. 2014 Oct;143(2):155-63. doi: 10.1111/imm.12297

58. Cordero-Ampuero J, Esteban J, Garcia-Rey E. Results after late polymicrobial, gram-negative, and methicillin-resistant infections in knee arthroplasty. Clin Orthop Relat Res. 2010;468(5):1229-36. doi: 10.1007/s11999-009-1224-9

59. Puntis D, Malik S, Saravanan V, et al. Urinary tract infections in patients with rheumatoid arthritis. Clin Rheumatol. 2013;32(3):355-60. doi: 10.1007/s10067-012-2129-7

60. Aguiar AA, Sampaio RO, Sampaio JL, et al. Effect of penicillin G every three weeks on oral microflora by penicillin resistant Viridans Streptococci. Arq Bras Cardiol. 2012 May;98(5):452-8. Epub 2012 Apr 19. doi: 10.1590/S0066-782X2012005000038

61. Robino L, Cordeiro N, Garcia-Fulgueiras V, et al. Treatment failure due to acquisition of antibiotic resistance: report of two clinical cases. Rev Chilena Infectol. 2013;30(3):326-8. doi: 10.4067/S0716-10182013000300010

62. Насонов ЕЛ. Прогресс ревматологии в начале XXI века. Современная ревматология. 2014;(3):4–8 [Nasonov EL. Progress in rheumatology in the early 21st century. Sovremennaya revmatologiya = Modern Rheumatology Journal. 2014;(3):4–8 (In Russ.)]. doi: 10.14412/1996-7012-2014-3-4-8


Для цитирования:


Гульнева М.Ю., Носков С.М., Малафеева Э.В. Оппортунистические микроорганизмы при ревматических заболеваниях. Научно-практическая ревматология. 2016;54(1):100-104. https://doi.org/10.14412/1995-4484-2016-100-104

For citation:


Gulneva M.Yu., Noskov S.M., Malafeeva E.V. OPPORTUNISTIC MICROORGANISMS IN RHEUMATIC DISEASES. Rheumatology Science and Practice. 2016;54(1):100-104. (In Russ.) https://doi.org/10.14412/1995-4484-2016-100-104

Просмотров: 473


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1995-4484 (Print)
ISSN 1995-4492 (Online)